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Home›Generale›Il coronavirus secondo un articolo su lancet è trasmissibile anche da un paziente asintomaticoetrico.

Il coronavirus secondo un articolo su lancet è trasmissibile anche da un paziente asintomaticoetrico.

By Silvana De Mari
2 Febbraio 2020
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https://www.thelancet.com/journals/lancet/article/PIIS0140-6736(20)30154-9/fulltext

 

Sommario

sfondo

Un focolaio in corso di polmonite associato a un nuovo coronavirus è stato segnalato nella città di Wuhan, nella provincia di Hubei, in Cina. I pazienti interessati erano geograficamente collegati a un mercato locale umido come potenziale fonte. Ad oggi non sono stati pubblicati dati sulla trasmissione da persona a persona o nosocomiale.

metodi

In questo studio, riportiamo i risultati epidemiologici, clinici, di laboratorio, radiologici e microbiologici di cinque pazienti in un gruppo familiare che presentavano polmonite inspiegabile dopo essere tornati a Shenzhen, nella provincia del Guangdong, in Cina, dopo una visita a Wuhan e un’altra famiglia membro che non ha viaggiato a Wuhan. Sono state condotte analisi filogenetiche delle sequenze genetiche di questi pazienti.

I risultati

Dal 10 gennaio 2020, abbiamo arruolato una famiglia di sei pazienti che hanno viaggiato a Wuhan da Shenzhen tra il 29 dicembre 2019 e il 4 gennaio 2020. Di sei membri della famiglia che hanno viaggiato a Wuhan, cinque sono stati identificati come infetti dal nuovo coronavirus. Inoltre, un membro della famiglia, che non ha viaggiato a Wuhan, è stato infettato dal virus dopo diversi giorni di contatto con quattro membri della famiglia. Nessuno dei membri della famiglia aveva contatti con mercati o animali di Wuhan, sebbene due avessero visitato un ospedale di Wuhan. Cinque membri della famiglia (di età compresa tra 36 e 66 anni) presentavano febbre, sintomi del tratto respiratorio superiore o inferiore o diarrea o una combinazione di questi 3-6 giorni dopo l’esposizione. Si sono presentati al nostro ospedale (Università di Hong Kong-Shenzhen Hospital, Shenzhen) 6-10 giorni dopo l’insorgenza dei sintomi. Loro e un bambino asintomatico (10 anni) avevano opacità polmonari di vetro smerigliato radiologiche. I pazienti più anziani (di età> 60 anni) presentavano più sintomi sistemici, estese alterazioni polmonari del vetro smerigliato, linfopenia, trombocitopenia e aumento dei livelli di proteina C reattiva e lattato deidrogenasi. I tamponi rinofaringei o della gola di questi sei pazienti erano negativi per i microbi respiratori noti mediante RT-PCR multiplex point-of-care, ma cinque pazienti (quattro adulti e il bambino) erano RT-PCR positivi per i geni che codificano l’RNA interno dipendente dall’RNA la polimerasi e la proteina Spike di superficie di questo nuovo coronavirus, confermate dal sequenziamento di Sanger. L’analisi filogenetica degli ampliconi RT-PCR di questi cinque pazienti e di due genomi completi mediante sequenziamento di prossima generazione ha mostrato che si tratta di un nuovo coronavirus,

Interpretazione

I nostri risultati sono coerenti con la trasmissione da persona a persona di questo nuovo coronavirus in ambito ospedaliero e familiare e con le segnalazioni di viaggiatori infetti in altre regioni geografiche.

finanziamento

The Shaw Foundation Hong Kong, Michael Seak-Kan Tong, Respiratory Viral Research Foundation Limited, Hui Ming, Hui Hoy e Chow Sin Lan Charity Fund Limited, Marina Man-Wai Lee, Hong Kong Hainan Commercial Association South China Microbiology Research Fund, Sanming Progetto di medicina (Shenzhen) e programma ospedaliero di alto livello (Commissione sanitaria del Guangdong).

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introduzione

La Commissione sanitaria della provincia di Hubei, in Cina, ha annunciato per la prima volta un gruppo di casi inspiegabili di polmonite il 31 dicembre 2019.

1

Sono stati inizialmente segnalati 27 pazienti, che sono stati successivamente rivisti a 41 l’11 gennaio 2020, con sette casi gravi e un decesso.

2

Alcuni pazienti presentavano alterazioni polmonari radiografiche del vetro smerigliato; linfociti dei globuli bianchi normali o inferiori alla media e conta piastrinica; ipossiemia; e disordinata funzionalità epatica e renale. Si diceva che la maggior parte fosse geograficamente legata al mercato all’ingrosso dei frutti di mare di Huanan, che in seguito fu riferito dai giornalisti che vendevano animali selvatici appena macellati.

3

Fino ad oggi, nessuna documentazione relativa alla trasmissione da persona a persona o agli operatori sanitari interessati è stata pubblicata nella letteratura scientifica. L’autorità sanitaria cinese ha dichiarato che i pazienti inizialmente hanno eseguito un test negativo per virus e batteri respiratori comuni, ma in seguito sono risultati positivi per un nuovo coronavirus.

2

Il virus fu presto isolato e il suo genoma fu sequenziato da numerosi scienziati cinesi.

4

Il virus è stato provvisoriamente nominato dall’OMS come il romanzo coronavirus 2019 (2019-nCoV). Qui, riportiamo i risultati epidemiologici, clinici, radiologici, di laboratorio e genomici di un gruppo familiare di cinque pazienti a Shenzhen che avevano una storia di viaggio a Wuhan e un altro membro della famiglia che non ha viaggiato a Wuhan.

metodi

 casi

Il 10 gennaio 2020, inizialmente abbiamo arruolato due pazienti che inizialmente presentavano all’Università di Hong Kong-Shenzhen Hospital (Shenzhen, provincia del Guangdong, Cina) con febbre, sintomi respiratori e infiltrati polmonari su radiografie del torace. Successivamente, tra l’11 e il 15 gennaio 2020, anche altri cinque membri di questa famiglia si sono presentati al nostro ospedale per la valutazione delle loro condizioni di salute.

Abbiamo registrato e analizzato la storia, i risultati fisici e i risultati delle indagini ematologiche, biochimiche, radiologiche e microbiologiche. Tutte le procedure di laboratorio per i campioni clinici sono state precedentemente riportate.

5

In breve, sono stati prelevati tamponi rinofaringei e alla gola, campioni di feci e urine e immessi in mezzi di trasporto virali. Il plasma è stato separato dalle bottiglie di EDTA e il siero è stato separato dalle bottiglie di sangue coagulato.

Questo studio è stato approvato dal Institution Review Board dell’Università di Hong Kong-Shenzhen Hospital (numero [2015] 90). Abbiamo ottenuto il consenso scritto dei pazienti.

 Rilevazione di agenti patogeni respiratori e diarroici

Campioni respiratori dei pazienti sono stati testati per i virus dell’influenza A e B e del virus respiratorio sinciziale utilizzando il saggio Xpert Xpress Flu / RSV (GeneXpert System, Cepheid, Sunnyvale, CA, USA) secondo le istruzioni del produttore.

6

Per rilevare la presenza di 18 bersagli del virus respiratorio e quattro batteri (compresi adenovirus, coronavirus [HCoV-229E, HCoV-Nl63, HCoV-Oc43, HCoV-HKU1 e MERS-CoV], metapneumovirus umano, virus respiratorio sinciziale, rinovovirus umano o enterovirus, virus dell’influenza A [H1, H1-2009 e H3], virus dell’influenza B, virus della parainfluenza [tipi 1–4], Bordetella pertussis , Bordetella parapertussis , Chlamydophila pneumoniae e Mycoplasma pneumoniae ), i campioni sono stati testati utilizzando BioFire FilmArray Respiratory Panel 2 plus (bioMérieux, Marcy l’Etoile, Francia) secondo le istruzioni del produttore.

7

I due campioni fecali sono stati prelevati dai pazienti che avevano la diarrea come parte dei loro sintomi e i campioni sono stati testati dal pannello gastrointestinale BioFire FilmArray (bioMérieux) per 22 agenti patogeni della diarrea.

 Trascrizione inversa, RT-PCR convenzionale interna e sequenziamento

La trascrizione inversa è stata eseguita usando la trascrittasi inversa SuperScript IV (Invitrogen, Carlsbad, USA) come precedentemente descritto.

8

La miscela di reazione (10 μL) conteneva 5 · 5 μL di RNA, 2 μL di 5 × tampone SuperScript IV, 0 · 5 μL di 100 mM di ditiotreitolo, 0 · 5 μL di 10 mM di deossinucleotide trifosfato (dNTP), 0 · 5 μL di esameri casuali da 50 μM, 0 · 5 μL di trascrittasi inversa SuperScript IV (200 U / μL) e 0 · 5 μl di acqua priva di RNasi. Le miscele sono state incubate a 23 ° C per 10 minuti, seguite da 50 ° C per 10 minuti e 80 ° C per 10 minuti. La miscela PCR (25 μL) conteneva 1 μL di cDNA, 2 · 5 μL di 10X PCR buffer II, 2 μL di 25 mM MgCl 2 , 0 · 5 μL di 10 mM di miscela dNTP, 2 · 5 μL di ogni 10 μM in avanti e primer inverso, 0 · 125 μL di AmpliTaq Gold Polymerase (Applied Biosystems, Foster City, USA; 5 U / μL) e acqua priva di nucleasi.

Il primo set di primer era il primer diretto (5′-CAAGTGGGGTAAGGCTAGACTTT-3 ′) e il primer inverso (5′-ACTTAGGATAATCCCAACCCAT-3 ′) rivolto a 344 bp di RNA polimerasi RNA-dipendente ( RdRp) gene di tutti i coronavirus correlati alla sindrome respiratoria acuta grave (SARS). Il secondo set di primer è stato progettato dopo la nostra prima sequenza del genoma 2019-nCoV dal sequenziamento Nanopore dai campioni clinici positivi: il primer anteriore (5′-CCTACTAAATTAAATGATCTCTGCTTTACT-3 ′) e il primer inverso (5′-CAAGCTATAACGCAGCCTGTA-3) il 158 bp del gene Spike (S) di questo nuovo coronavirus. Questi set sono stati utilizzati per PCR utilizzando un termociclatore automatico (Applied Biosystems) con un avvio a caldo a 95 ° C per 10 minuti, seguito da 50 cicli di 94 ° C per 1 minuto, 55 ° C per 1 minuto e 72 ° C per 1 minuto e un’estensione finale a 72 ° C per 10 minuti. I prodotti della PCR sono stati rilevati mediante elettroforesi su gel di agarosio. I prodotti PCR con dimensioni target corrette sono stati purificati utilizzando il kit di estrazione gel QIAquick (Qiagen). Entrambe le componenti dei prodotti PCR sono state sequenziate con un analizzatore genetico Dx ABI 3500xl (Applied Biosystems) utilizzando i primer PCR. Durante la preparazione dei test, abbiamo inizialmente utilizzato il cDNA SARS-CoV come controllo positivo perDosaggio RdRp e frammento sintetizzato genicamente per il dosaggio Spike. Successivamente, i campioni diluiti di pazienti positivi sono stati utilizzati come controllo positivo per entrambi i saggi. Tutti i risultati positivi sono stati confermati dal sequenziamento di Sanger.

 Saggio RT-PCR in tempo reale in un unico passaggio

Un totale di 140 μL di campioni respiratori, di urina, di feci, di siero o di plasma di ciascun paziente è stato sottoposto all’estrazione di RNA in 50 μL di elute usando il Mini Kit QIAamp Viral RNA (Qiagen, Hilden, Germania). Per il dosaggio sono stati utilizzati primer Forward (5′-CCTACTAAATTAAATGATCTCTGCTTTACT-3 ′) e reverse (5′-CAAGCTATAACGCAGCCTGTA-3 ′) destinati al gene S di questo nuovo coronavirus. Il test RT-PCR in tempo reale è stato eseguito utilizzando il kit QuantiNova SYBR Green RT-PCR (Qiagen) in un sistema PCR in tempo reale LightCycler 480 (Roche, Basilea, Svizzera), come precedentemente descritto.

9

Ogni miscela da 20 μL di reazione conteneva 10 μL di 2 × QuantiNova SYBR Green RT-PCR Master Mix, 0 · 2 μL di QN SYBR Green RT-Mix, 1 μM di ogni 10 μM primer diretti e inversi e 5 μL di RNA e nucleasi -acqua gratis. Le reazioni sono state incubate a 50 ° C per 10 minuti e 95 ° C per 2 minuti, seguite da 45 cicli a 95 ° C per 5 secondi e 60 ° C per 30 secondi, quindi sottoposte all’analisi della curva di fusione (95 ° C per 5 s, 65 ° C per 1 minuto, seguito da un graduale aumento della temperatura a 97 ° C con registrazione continua della fluorescenza).

 Sequenziamento del genoma intero e analisi del genoma mediante bioinformatica

Il sequenziamento del genoma intero è stato eseguito utilizzando il dispositivo Oxford Nanopore MinION (Oxford Nanopore Technologies, Oxford, Regno Unito) integrato dal sequenziamento Sanger. L’RNA è stato estratto da campioni rinofaringei e espettorati impoveriti di cellule ospiti utilizzando un mini kit QIAamp Viral RNA, come descritto in precedenza.

10

, 

11

, 

12

L’amplificazione dell’intero genoma del coronavirus è stata eseguita utilizzando un approccio di amplificazione a singolo innesco indipendente dalla sequenza, come descritto in precedenza.

13

Le analisi bioinformatiche sono state condotte utilizzando una pipeline interna. I dettagli sulla preparazione della biblioteca e l’analisi bioinformatica sono descritti nell’appendice (pagine 1–2) . La sequenza di consenso di HKU-SZ-002a (numero di accesso MN938384) e HKU-SZ-005b (numero di accesso MN975262) ​​è stata depositata in GenBank. Le letture grezze, dopo aver escluso le letture umane, sono state depositate in BioProject (numero di adesione PRJNA601630).

 Costruzione filogenetica dell’albero

Alberi filogenetici sono stati costruiti utilizzando il software MEGA X utilizzando gli ampliconi RT-PCR delle regioni geniche RdRp e S parziali dei ceppi rilevati in questo studio e altri coronavirus correlati.

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Gli alberi degli ampliconi sono stati costruiti usando metodi di massima verosimiglianza con valori bootstrap calcolati da 1000 alberi, con coronavirus umano 229E come outgroup. L’albero filogenetico del genoma a lunghezza intera è stato costruito utilizzando il metodo di giunzione adiacente usando il modello Tamura-Nei con una distribuzione gamma. I valori bootstrap sono stati calcolati da 1000 alberi e sono stati visualizzati solo valori maggiori di 70.

 Ruolo delle fonti di finanziamento

I finanziatori dello studio non hanno avuto alcun ruolo nella progettazione dello studio, nella raccolta dei dati, nell’analisi dei dati, nell’interpretazione dei dati o nella stesura del rapporto. L’autore corrispondente aveva pieno accesso a tutti i dati dello studio e aveva la responsabilità finale della decisione di presentare per la pubblicazione.

risultati

Il gruppo familiare di sei pazienti (pazienti 1-6) è volato da Shenzhen a Wuhan il 29 dicembre 2019 e è tornato a Shenzhen il 4 gennaio 2020 ( figura 1 ). Questo periodo di viaggio si è sovrapposto al periodo successivo all’annuncio del primo caso di polmonite di Wuhan (insorgenza dei sintomi il 12 dicembre 2019) secondo l’autorità sanitaria cinese.

2

Non avevano alcuna storia di contatto con animali, visite a mercati tra cui il mercato all’ingrosso di frutti di mare di Huanan a Wuhan o il consumo di carne di selvaggina nei ristoranti. La famiglia ha soggiornato nello stesso hotel per tutto il viaggio. I pazienti 1 e 2 hanno alloggiato in una stanza e i pazienti 3-6 hanno soggiornato in un’altra stanza. Dopo che il paziente 4 ha sviluppato febbre e diarrea il 1 ° gennaio 2020, i pazienti 5 e 6 sono rimasti nella stessa stanza dei pazienti 1 e 2 e il paziente 3 è rimasto con il paziente 4. I pazienti 1-6 avevano incontrato i loro parenti (parenti 2–5 : una cugina e tre zie della paziente 3) ogni giorno durante il loro soggiorno a Wuhan per i pasti. Relative 4 ha fatto frequenti visite al mercato umido, ma non al mercato all’ingrosso dei frutti di mare di Huanan, che era stato implicato dall’autorità sanitaria come centro epidemico. I parenti 2–5 hanno sviluppato febbre, tosse e debolezza dal 4 gennaio 2020. I pazienti 1 e 3 avevano visitato il parente 1, di 1 anno di età, e il figlio del parente 2, il 29 dicembre 2019, in un ospedale di Wuhan, che erano stati trattati in ospedale per polmonite febbrile (il parente 2 ha accompagnato il parente 1 in ospedale durante la notte ; il parente 1 in seguito si riprese e fu dimesso a casa il 31 dicembre 2019). Il paziente 3, ma non il paziente 1, aveva indossato una maschera chirurgica durante la visita in ospedale. Il periodo di incubazione è stato stimato tra 3 e 6 giorni. I pazienti 1–4 erano sintomatici e si sono presentati al nostro ospedale (Università di Hong Kong-Shenzhen Hospital, Shenzhen) 6-10 giorni dopo l’insorgenza dei sintomi. Per i due bambini asintomatici (pazienti 5 e 6), il paziente 5 presentava opacità polmonari in vetro smerigliato identificate mediante TC. A differenza del paziente 5, che aveva 10 anni e non conforme alla guida dei genitori, il paziente 6, che aveva 7 anni e che la madre riferì di indossare una maschera chirurgica per la maggior parte del tempo durante il periodo a Wuhan, non è stata trovata alcuna infezione da indagini virologiche o radiologiche. Gli esami del sangue e la TAC del paziente 6 erano normali. Dopo il loro ritorno a Shenzhen il 4 gennaio 2020, i pazienti 3-6 rimasero nella stessa famiglia del paziente 7 (madre del paziente 4) fino all’11 gennaio 2020. Il paziente 7, che non andò a Wuhan o visitò i mercati di Shenzhen nel precedenti 14 giorni, ha sviluppato mal di schiena e debolezza generalizzata e ha frequentato la clinica ambulatoriale in un altro ospedale locale l’8 gennaio 2020. Le è stato somministrato cefaclor per 3 giorni senza alcun miglioramento. Ha sviluppato febbre e tosse secca e ha frequentato la stessa clinica ambulatoriale ed è stata trattata con cefazolina per via endovenosa (due dosi) il 12 gennaio 2020. È stata ricoverata nel nostro ospedale il 15 gennaio 2020,

Figura miniatura gr1
Figura 1 Cronologia dell’insorgenza dei sintomi del gruppo familiare di Shenzhen e dei suoi contatti a Wuhan
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Dei sei pazienti con infiltrati polmonari (pazienti 1-5 e paziente 7) sottoposti a scansione TC, tre erano maschi e tre femmine, con un’età compresa tra 10 e 66 anni ( tabella 1). Quattro avevano comorbilità croniche e cinque avevano una storia di febbre. I tre pazienti più anziani (di età> 60 anni: pazienti 1, 2 e 7) presentavano tosse secca e debolezza generalizzata. Il paziente 4 ha avuto tosse produttiva. I pazienti 3 e 4 erano adulti più giovani e presentavano sintomi di diarrea e del tratto respiratorio superiore inclusi mal di gola, congestione nasale e rinorrea. Il paziente 3 aveva anche dolore toracico pleuritico. Ad eccezione del paziente 4, tutti e sei avevano conteggi normali o inferiori alla media dei globuli bianchi. I tre pazienti più anziani (pazienti 1, 2 e 7) avevano tutti un aumento sostanziale dei livelli di proteina C reattiva, fibrinogeno e lattato deidrogenasi. I pazienti 1 e 2 presentavano anche linfopenia, lieve trombocitopenia e prolungato tempo di tromboplastina attivata. Tutti e sei i pazienti hanno mostrato opacità di vetro smerigliato multifocali,figura 2 ). Non sono stati osservati altri cambiamenti clinici o radiologici di congestione polmonare, fibrosi o cancro per spiegare questi cambiamenti polmonari di vetro smerigliato, o eventuali cambiamenti radiologici concomitanti di consolidamento denso, versamento pleurico, linfoadenopatia o pneumomediastino.

Tabella 1 Riepilogo delle caratteristiche cliniche e dei risultati di laboratorio del cluster familiare infetto dal romanzo coronavirus 2019, alla presentazione
Paziente 1 Paziente 2 Paziente 3 Paziente 4 Paziente 5 Paziente 7
Relazione Madre del paziente 3 Padre del paziente 3 Figlia dei pazienti 1 e 2 Genero dei pazienti 1 e 2 Nipote dei pazienti 1 e 2 Madre del paziente 4 a Shenzhen
Età (anni) 65 66 37 36 10 63
Sesso Femmina Maschio Femmina Maschio Maschio Femmina
Occupazione Pensionato Pensionato Impiegato Architetto Alunno Pensionato
Malattia medica cronica Ipertensione; tumore intracranico benigno trattato con gamma knife Ipertensione Nessuna Sinusite cronica Nessuna Diabete
Intervallo tra l’insorgenza dei sintomi e l’arrivo a Wuhan (giorni) 5 (esposizione in ospedale) 6 4 (esposizione in ospedale) 3 N / A N / A
Intervallo tra il ricovero in ospedale e l’insorgenza dei sintomi (giorni) 7 6 9 10 N / A 7
Presentando sintomi e segni .. .. .. .. .. ..
Febbre + + + + – +
Tosse + (secco) + (secco) – + (produttivo) – + (secco)
Debolezza generalizzata + + – – – +
Congestione nasale – – + – – –
rinorrea – – – + – –
starnuti – – – + – –
Gola infiammata – – + – – –
Dolore al petto pleuritico – – + – – –
Diarrea – – + (3 giorni, 5–6 volte al giorno) + (4 giorni, 7–8 volte al giorno) – –
Temperatura corporea (° C) 39 · 0 39 · 0 36 · 2 36 · 5 36 · 5 39 · 0
Saturazione ossimetria (%) 94% 96% N / A N / A N / A N / A
Emoglobina (g / dL); (intervallo normale maschile 13 · 3–17 · 1; intervallo normale femminile 11 · 5–14 · 8) 13 · 1 15 · 6 15 · 0 15 · 2 14 · 6 13 · 0
Conta dei globuli bianchi (× 10 9 cellule per L); (intervallo normale 3 · 9–9 · 9) 4 · 8 4 · 2 5 · 6 11 · 4 (↑) 6 · 5 4 · 3
Conta dei neutrofili (× 10 9 cellule per L); (intervallo normale 2 · 0–7 · 4) 4 · 0 3 · 2 3 · 1 8 · 1 (↑) 3 · 2 2 · 7
Lymphocyte count (× 109 cells per L); (normal range 1·1–3·6) 0·6 (↓) 0·7 (↓) 2·2 2·7 2·8 1·2
Platelet count (× 109 cells per L); (normal range 162–341) 157 (↓) 118 (↓) 224 196 197 205
Prothrombin time (s); (normal range 11·0–14·5) 12·6 12·5 13·0 13·0 13·1 12·9
International normalised ratio 1·0 1·0 1·0 1·0 1·0 1·0
Activated partial thromboplastin time (s); (normal range 26·0–40·0) 45·4 (↑) 45·3 (↑) 36·0 31·4 34·0 35·8
D-dimer (μg/mL); (normal range 0·0–0·5) 0·6 (↑) 0·3 NA NA NA 0·6 (↑)
Fibrinogen (g/dL); (normal range 2·0–4·0) 6·2 (↑) 5·1 (↑) 3·8 3·8 2·9 4·5 (↑)
C-reactive protein (mg/L); (normal range 0·0–5·0) 55·6 (↑) 34·2 (↑) 0·5 4·9 0·2 44·9 (↑)
Albumin (g/L); (normal range 35·0–52·0) 39·4 38·5 50·4 48·1 49·1 41·2
Bilirubin (μmol/L); (normal range 0·0–21·0) 6·9 5·9 9·3 8·9 3·6 10·4
Alkaline phosphatase (U/L); (normal range 35–105) 68 56 56 48 211 (↑) 66
Alanina aminotransferasi (U / L); (intervallo normale 0 · 0–33 · 0) 14 · 2 13 · 9 25 · 9 20 · 2 23 · 9 17 · 3
Aspartato aminotransferasi (U / L); (intervallo normale 0 · 0–32 · 0) 20 · 5 23 · 3 27 · 4 18 · 1 28 · 2 27 · 6
Urea (mmol / L); (intervallo normale 2 · 8–8 · 1) 3 · 5 5 · 7 3 · 1 5 · 2 5 · 6 4 · 9
Creatinina (μmol / L); (intervallo normale 44–80) 53 93 (↑) 67 87 (↑) 51 55
Sodio (mmol / L); (intervallo normale 136-145) 136 133 (↓) 142 141 141 139
Potassio (mmol / L); (intervallo normale 3 · 5–5 · 1) 3 · 2 (↓) 3 · 7 3 · 7 3 · 7 3 · 9 3 · 8
Creatina chinasi (U / L); (intervallo normale 0–170) 42 109 50 137 78 143
Lattato deidrogenasi (U / L); (intervallo normale 135–214) 286 (↑) 232 (↑) 192 176 194 252 (↑)
Amilasi (U / L); (intervallo normale 28–100) N / A N / A 70 61 61 N / A
NA = non disponibile. + = Positivo. – = negativo. ↑ = sopra l’intervallo normale. ↓ = sotto l’intervallo normale.
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Figura miniatura gr2
Figura 2 Immagini rappresentative delle scansioni TC toraciche che mostrano alterazioni multifocali del vetro smerigliato nei polmoni del paziente 1 (A), paziente 2 (B), paziente 3 (C) e paziente 5 (D)
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Tutti i campioni respiratori sono risultati negativi su due sistemi PCR multiplex point-of-care per 18 target virali respiratori e quattro target batterici. I due campioni fecali di pazienti 3 e 4 che avevano avuto una precedente diarrea erano negativi su un test PCR multiplex per i comuni virus della diarrea, batteri e parassiti ( tabella 2 ). I campioni respiratori dei pazienti 1, 2, 4, 5 e 7 erano positivi sia per i geni RdRp e S mediante RT-PCR convenzionale, sia per il gene S mediante RT-PCR in tempo reale, confermati dal sequenziamento di Sanger di tutti ampliconi ( appendice pp 3–5 ). Sebbene i campioni respiratori del paziente 3 fossero negativi per entrambi gli RdRpe gene S (raccolto 9 giorni dopo l’insorgenza dei sintomi), era ancora considerata un caso infetto perché era fortemente epidemiologicamente legata all’esposizione all’ospedale di Wuhan e mostrava radiologicamente opacità polmonari multifocali in vetro smerigliato. Solo il campione di siero del paziente 2 era positivo e tutti i campioni di siero, urina e feci di tutti gli altri pazienti erano negativi per questo nuovo coronavirus. L’analisi filogenetica dei prodotti PCR ha mostrato che le sequenze di ampliconi di entrambi i geni RdRp e S di questi cinque pazienti erano nuove ( figura 3 ) e diverse da altri coronavirus umani o animali noti, tra cui la SARS e i coronavirus legati alla SAR del pipistrello.

Tabella 2 Risultati microbiologici da campioni clinici raccolti dal cluster familiare infetto con il nuovo coronavirus 2019, alla presentazione
Paziente 1 Paziente 2 Paziente 3 Paziente 4 Paziente 5 Paziente 7
Intervallo tra raccolta del campione e insorgenza dei sintomi (giorni) 7 6 9 10 N / A 7
RT-PCR convenzionale .. .. .. .. .. ..
Tampone nasofaringeo .. .. .. .. .. ..
RdRp + + ND + ND +
spuntone + + ND + + +
Tampone alla gola .. .. .. .. .. ..
RdRp N / A N / A ND ND ND +
spuntone N / A N / A ND + + +
Siero .. .. .. .. .. ..
RdRp ND ND N / A N / A N / A N / A
spuntone ND + N / A N / A N / A N / A
Plasma .. .. .. .. .. ..
RdRp N / A N / A ND ND ND N / A
spuntone N / A N / A ND ND ND N / A
Urina .. .. .. .. .. ..
RdRp ND ND ND ND ND N / A
spuntone ND ND ND ND ND N / A
Sgabello .. .. .. .. .. ..
RdRp N / A N / A ND ND ND N / A
spuntone N / A N / A ND ND ND N / A
RT-PCR in tempo reale (gene spike) .. .. .. .. .. ..
Tampone nasofaringeo + (Ct 31) + (Ct 27) ND + (Ct 31) ND + (Ct 27)
Tampone alla gola N / A N / A ND ND + (Ct 40) + (Ct 33)
sputo N / A N / A N / A N / A + (Ct 27) + (Ct 25)
Siero ND + (Ct 40) N / A N / A ND N / A
Plasma N / A N / A ND ND ND ND
Urina ND ND ND ND ND N / A
Sgabello N / A N / A ND ND ND ND
FilmArray RP2 plus (solo tampone rinofaringeo) ND ND ND ND ND ND
Xpert Xpress Flu / RSV (solo tampone rinofaringeo) ND ND ND ND ND ND
Pannello GI FilmArray (solo campione fecale) N / A N / A ND ND N / A N / A
Valori Ct per RT-PCR in tempo reale presentati tra parentesi. Ct = soglia del ciclo. NA = non disponibile. + = Positivo. ND = non rilevato. RdRp = RNA polimerasi RNA-dipendente. RP2 = pannello respiratorio 2. Influenza = influenza. RSV = virus respiratorio sinciziale. GI = gastrointestinale.
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Figura 3 Alberi filogenetici di sequenze genetiche
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Figura 3 Alberi filogenetici di sequenze genetiche
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Due genomi virali completi (HKU-SZ-002a e HKU-SZ-005b) sono stati sequenziati utilizzando la tecnologia Nanopore e hanno mostrato un nuovo coronavirus che è più strettamente correlato a quelli del coronavirus bat-SL-simile a Bat-SL-CoVZXC21 (numero di accessi NCBI) MG772934) e bat-SL-CoVZC45 (numero di accesso NCBI MG772933). La loro organizzazione del genoma è tipica di un lignaggio B betacoronavirus. Le dimensioni dei genomi del virus dal paziente 2 (HKU-SZ-002a) e dal paziente 5 (HKU-SZ-005b) sono circa 29 · 8 kilobasi con contenuto di GC del 38% ( appendice p 6 ). HKU-SZ-002a e HKU-SZ-005b differiscono l’uno dall’altro solo per due basi. Uno di questi è una mutazione non sinonima nella posizione 336 dell’amminoacido della proteina non strutturale 4 (Ser336 per HKU-SZ-002a; Leu336 per HKU-SZ-005b; figura 4). Sebbene la sequenza aminoacidica del dominio N-terminale della subunità 1 di Spike di questo nuovo coronavirus sia approssimativamente del 66% identica a quella dei coronavirus correlati alla SARS, e il dominio centrale del dominio di legame del recettore di questo nuovo coronavirus ha circa il 68% di aminoacidi identità acida con quelli del coronavirus SARS-correlato, la sequenza proteica della regione del sottodominio esterno del dominio di legame del recettore della subunità 1 di Spike ha solo il 39% di identità, il che potrebbe influenzare la scelta del recettore umano e quindi il comportamento biologico di questo virus ( figura 4 ).

Figura miniatura gr4
Figura 4 Organizzazione del genoma di 2019-nCoV e identità degli aminoacidi di diverse subunità e domini dello Spike tra ceppi umani 2019-nCoV (HKU-SZ-002a e HKU-SZ-005b) e bat-SL-CoV-ZC45
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Tutti e sei i pazienti sono stati ricoverati in ospedale in isolamento, in terapia di supporto e sono rimasti stabili dal 20 gennaio 2020.

Discussione

Segnaliamo qui un gruppo familiare di polmonite inspiegabile dovuta a 2019-nCoV. Sei dei sette membri della famiglia avevano cambiamenti radiologici della polmonite virale, tra cui cinque (pazienti 1, 2, 4, 5 e 7) risultati positivi per 2019-nCoV mediante RT-PCR. Cinque pazienti (pazienti 1, 2, 3, 4 e 7) presentavano sintomi associati al momento della presentazione. Le sequenze complete del genoma dei due ceppi dei pazienti 2 e 5 hanno mostrato un’identità nucleotidica quasi completa l’una con l’altra ed erano più vicine ai coronavirus correlati alla SARS di pipistrello segnalati nel 2018. Esistono diversi possibili scenari di trasmissione. Il primo e più probabile scenario è che un paziente con polmonite documentato virologicamente (paziente 1) ha acquisito l’infezione da un ospedale di Wuhan mentre visitava il suo parente (parente 1) e quindi i pazienti 1–5 hanno trasmesso il virus al paziente 7 al ritorno a Shenzhen. Il secondo scenario è che i pazienti 1–5 hanno acquisito direttamente l’infezione dai parenti 2–5 e l’hanno trasmessa al paziente 7 al ritorno a Shenzhen. Ma questo scenario è meno probabile perché i pazienti 1–5 hanno sviluppato sintomi prima dei parenti 2–5. Il terzo scenario è che i pazienti 1–5 hanno acquisito l’infezione da una fonte comune sconosciuta a Wuhan e l’hanno trasmessa al paziente 7 quando sono tornati a Shenzhen. Per i parenti dei pazienti (parenti 2–5), avrebbero potuto contrarre l’infezione dall’ospedale o dalla comunità, sebbene non fosse possibile alcuna conferma virologica e non avessero contatti con animali, cibo di selvaggina o visite al mercato all’ingrosso dei frutti di mare dell’Huanan. In particolare, il paziente 1 o il paziente 3 che avevano visitato l’ospedale di Wuhan potrebbe essere stato contagioso prima dell’insorgenza dei sintomi perché il paziente 5 stava diffondendo virus senza sintomi.

Molte delle caratteristiche epidemiologiche, cliniche, di laboratorio e radiologiche di questa nuova polmonite da coronavirus erano simili a quelle dei pazienti con SARS nel 2003.

8

, 

15

, 

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Il periodo di incubazione della polmonite di Wuhan è apparso simile a quello della SARS. Il tasso di attacco è piuttosto elevato, fino all’83% se includessimo i cinque pazienti (pazienti 1, 2, 3, 4 e 5) con alterazioni radiografiche polmonari inspiegabili del polmone alla TC come definizione del caso in questa famiglia scoppio dopo aver visitato Wuhan. Una scoperta piuttosto inaspettata dalla TAC polmonare del paziente 5, che è stata fatta su insistenza dai genitori nervosi, ha anche mostrato cambiamenti polmonari nel vetro smerigliato. Il paziente 5 è stato successivamente confermato virologicamente per avere un’infezione asintomatica. Sebbene i pazienti asintomatici con SARS fossero rari, sono stati documentati nel nostro studio retrospettivo sull’epidemia di SARS minore del 2004 dopo la riapertura del mercato della fauna selvatica a Guangzhou.

17

In particolare, i pazienti 3 e 4 erano afebrili alla presentazione al nostro ospedale. Questi casi criptici di polmonite da deambulazione potrebbero servire come possibile fonte per propagare l’epidemia. Ulteriori studi sul significato epidemiologico di questi casi asintomatici sono giustificati.

I sintomi di questa nuova polmonite erano anche non specifici. I tre pazienti più anziani in questa famiglia con comorbidità presentavano sintomi sistemici più gravi di debolezza generalizzata e tosse secca. Come previsto, potrebbero aver ridotto la conta dei globuli bianchi, dei linfociti o delle piastrine totali, con un tempo di tromboplastina attivato esteso e un aumento del livello di proteina C-reattiva. I cambiamenti multifocali del vetro smerigliato nella TC del polmone erano tipici della polmonite virale. Il loro coinvolgimento polmonare era anche più diffuso ed esteso rispetto a quelli dei pazienti più giovani, i cui risultati degli esami del sangue erano in gran parte normali. Il paziente 4, che aveva una storia di sinusite cronica, potrebbe avere una superinfezione batterica perché aveva una tosse produttiva invece di una tosse secca. Aveva anche un elevato numero di globuli bianchi, sebbene il test batterico fosse negativo.

Interestingly, the two younger adults (patients 3 and 4) initially had diarrhoea, which was also reported in 10·6% (15 of 142) of our SARS patients at presentation;

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however, the subsequent faecal samples of patients 3 and 4 that were collected 9–10 days after symptom onset were negative for the virus after the diarrhoea had long subsided. Up to 30% of patients with Middle East respiratory syndrome coronavirus (MERS-CoV) also have diarrhoea.

19

Subgenomic RNA indicating viral replication was seen in faecal samples of patients with MERS.

20

Moreover, MERS-CoV was shown to survive in simulated fed gastrointestinal juice and the ability to infect intestinal organoid models.

20

Diarrhoea and gastrointestinal involvement are well known in coronavirus infections of animals and humans.

21

On microbiological testing, we did not find any evidence of other known respiratory viral or bacterial infections, but specific RT-PCR assays for two widely separated genome targets—the highly conserved RdRp and the highly variable S genes—were positive for this novel 2019-nCoV. Two complete genome sequences of this novel coronavirus were recovered from the nasopharyngeal swab of patient 2 and the sputum sample of patient 5 with an earlier cycle threshold value indicating a higher viral load. Patient 2 had more underlying comorbidities and clinical features and radiological findings of more severe disease than the other patients included here. Moreover, the serum sample of patient 2 was also positive for 2019-nCoV, which might indicate some virus spillover from the more severely infected lung into the systemic circulation, as previously reported in patients with SARS.

22

Sputum samples were available for testing from patients 5 and 7. The cycle threshold values of the sputum samples were 8–13 cycles earlier than those of throat swabs, indicating higher viral loads detected in the lower respiratory tract. This finding is consistent with the observations in patients with MERS who had higher viral loads in lower respiratory tract samples than in upper respiratory tract samples.

23

Thus, repeat testing of upper respiratory tract samples or testing of lower respiratory tract samples are warranted in clinically suspected cases with an initially negative result in nasopharyngeal or throat swab. Unlike our patients in the 2003 SARS outbreak,

22

we found no evidence of viral shedding in urine and faeces in these six patients. However, improved systematic serial collection and testing of an increased number of such samples is warranted.

Coronaviruses are enveloped, positive-sense, single-stranded RNA viruses, capable of rapid mutation and recombination. They are classified into alphacoronaviruses and betacoronaviruses, which both have their gene source from bats and are mainly found in mammals such as bats, rodents, civets, and humans; and gammacoronaviruses and deltacoronaviruses, which both have their gene source from birds and are mainly found in birds.

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, 

25

, 

26

Phylogenetic analysis of the PCR amplicon fragments from five of our six patients and the complete virus genome of 29·8 kilobases from patients 2 and 5 showed that the virus is a novel betacoronavirus belonging to the lineage B or subgenus sarbecovirus, which also includes the human SARS coronavirus. The genome of our virus strains are phylogenetically closest to the bat SARS-related coronaviruses first found in the Chinese horseshoe bats, Rhinolophus sinicus, captured in Zhoushan, Zhejiang province, China, between 2015 and 2017.

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Notably, the first SARS-related coronavirus was also discovered in the R sinicus found in Hong Kong, and central and south China in 2005.

28

, 

29

The full virus genome had about an 89% nucleotide identity with bat-SL-CoVZC45, which makes it a new species. Moreover, the Spike protein of our virus has an 84% nucleotide identity with the bat-SL-CoVZC45 coronavirus and an 78% nucleotide identity with the human SARS coronavirus. Although substantial genetic differences exist between this and other betacoronaviruses, cross reactions in RT-PCR or antibody assays for SARS or other betacoronaviruses are possible if the primers and antigenic epitopes are not carefully chosen, as previously reported.

30

Further studies on the optimal diagnostic tests are warranted.

In summary, an outbreak of novel coronavirus is ongoing at Wuhan in the winter of 2019–20. Similar to the 2003 SARS outbreak in Guangzhou, Wuhan is also a rapidly flourishing capital city of the Hubei province and the traffic hub of central China. Moreover, both outbreaks were initially connected to wet markets where game animals and meat were sold. In the case of SARS, person-to-person transmission was efficient and super-spreading events had led to major outbreaks in hotels and hospitals. Learning from the SARS outbreak, which started as animal-to-human transmission during the first phase of the epidemic, all game meat trades should be optimally regulated to terminate this portal of transmission. But as shown in this study, it is still crucial to isolate patients and trace and quarantine contacts as early as possible because asymptomatic infection appears possible (as shown in one of our patients), educate the public on both food and personal hygiene, and alert health-care workers on compliance to infection control to prevent super-spreading events. Unlike the 2003 SARS outbreak, the improved surveillance network and laboratory capability of China was able to recognise this outbreak within a few weeks and announced the virus genome sequences that would allow the development of rapid diagnostic tests and efficient epidemiological control. Our study showed that person-to-person transmission in family homes or hospital, and intercity spread of this novel coronavirus are possible, and therefore vigilant control measures are warranted at this early stage of the epidemic.
Contributors
JF-WC and K-YY had roles in the study design, clinical management, patient recruitment, data collection, data analysis, data interpretation, literature search, and writing of the manuscript. SY, K-HK, KK-WT, HChu, CC-YY, RW-SP, H-WT, SK-FL, K-HC, VK-MP, W-MC, JDI, J-PC, VC-CC, and HChe had roles in the experiments, data collection, data analysis, and data interpretation. JY, CK-MH, FX, and JL had roles in recruitment, data collection, and clinical management. All authors reviewed and approved the final version of the manuscript.
Declaration of interests
We declare no competing interests.
Acknowledgments
This study was partly supported by the Shaw Foundation Hong Kong; Michael Seak-Kan Tong; Respiratory Viral Research Foundation; Hui Ming, Hui Hoy and Chow Sin Lan Charity Fund Limited; Marina Man-Wai Lee; the Hong Kong Hainan Commercial Association South China Microbiology Research Fund; Sanming Project of Medicine in Shenzhen, China (SZSM201911014 and SZSM201612096); and the High Level-Hospital Program, Health Commission of Guangdong Province, China.

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References

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Silvana De Mari

Nell’ora dell’inganno universale dire la verità è un atto rivoluzionario. (G. Orwell)

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